PRIMERCAT · BENCH PROTOCOLS

实验流程库

面向研究实验室的结构化参考流程。每份文件明确适用范围、关键参数、必要对照、验收标准和原始来源。

核酸约 1.5–3 小时常规

高保真 PCR

从反应设计、主混合液到扩增后验证的基础工作流。参数以 Phusion 为示例,实际设置必须跟随所用酶说明书。

文件编号
PC-PRO-001
版本
1.0
内容复核
2026-08-31
文件属性
研究参考流程
操作程序0% 完成

01适用范围与排除项

适用于使用 NEB Phusion High-Fidelity DNA Polymerase 的常规 DNA 扩增参考。若使用其他聚合酶、热启动体系、长片段、GC-rich 模板或临床/诊断样本,必须采用相应产品说明书和本机构验证流程。

02关键参数与适用条件

参数参考值适用说明
反应体积20 µL 或 50 µLNEB Phusion 示例体系;缩放时保持各组分终浓度。
引物终浓度各 0.5 µM对应 10 µM 引物在 20 µL 体系中各加 1 µL。
dNTP 终浓度各 200 µM以 10 mM dNTP mix 为例,20 µL 体系加入 0.4 µL。
循环框架98°C 30 s;25–35 cycles变性 98°C 5–10 s;退火由 NEB Tm Calculator 确定;72°C 延伸 15–30 s/kb。仅适用于所引 Phusion 条件。

03必要对照

  1. 01无模板对照(NTC):监测主混合液、环境或移液过程污染。
  2. 02阳性扩增对照:在新引物、新模板类型或排错时确认反应体系有效。
  3. 03必要时设置提取空白或逆转录阴性对照,控制上游步骤引入的信号。

04试剂、耗材与设备

  • 高保真聚合酶、配套缓冲液与 dNTP
  • 正向/反向引物、模板 DNA 与无核酸酶水
  • PCR 管、冰盒、移液器与热循环仪
  • 无模板对照;需要时加入阳性对照

05操作程序

确认反应体系

打开当前聚合酶的产品说明书,记录缓冲液倍数、推荐引物浓度、模板范围、退火温度算法和延伸速率。不要把不同酶的参数混用。

规划对照与孔位

至少设置无模板对照,并在需要判断体系是否工作的场景加入阳性对照。先建立加样表,再标记所有反应管。

配制主混合液

在冰上解冻并轻柔混匀组分。按反应数外加合理移液余量配制不含模板的主混合液;聚合酶按说明书要求最后加入。

分装并加入模板

将主混合液分装到各管,在独立区域加入模板和对照,换枪头避免交叉污染;短暂离心收集液体。

运行热循环

Phusion 的常规参考是 98°C 初始变性,25–35 个循环,并按 NEB Tm 工具确定退火温度、按片段复杂度设置 15–30 秒/kb 延伸;其他酶必须使用各自参数。

验证并记录

结合扩增目的选择琼脂糖凝胶、片段分析或下游纯化。先检查对照,再解释样本;记录程序、模板量、引物批次和异常。

06验收标准

  • NTC 在目标片段区域无可见扩增;阳性对照产生预期大小条带。
  • 样本主条带与预期片段大小一致,且非特异条带/拖尾在下游用途允许范围内。
  • 所有偏离预设程序、试剂替换和重复实验均被记录。

07必须记录

  • 模板 ID、类型、输入量与保存位置
  • 引物序列/批次、工作液浓度与目标片段长度
  • 聚合酶货号/批次、反应配方、热循环程序与凝胶原图
!

关键边界

本卡的温度和时间只对应所引 Phusion 示例。不同聚合酶、模板 GC 含量与扩增长度会改变最优条件。

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安全提醒

扩增产物区与反应配制区分开;凝胶染料、UV/蓝光成像和含样废物按本实验室 SDS、SOP 与分区制度处理。

文件属性:研究参考流程,不是经机构批准的受控 SOP。使用前必须由实验负责人依据具体试剂、设备、样本和风险评估完成本地验证;产品说明书和机构制度优先。